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Funktionelle Charakterisierung bakterieller Histondeacetylase-ähnlicher Amidohydrolasen (HDAH)

dc.contributor.advisorSchwienhorst, Andreas PD Dr.de
dc.contributor.authorHildmann, Christiande
dc.date.accessioned2012-04-16T14:56:26Zde
dc.date.available2013-01-30T23:50:50Zde
dc.date.issued2005-12-05de
dc.identifier.urihttp://hdl.handle.net/11858/00-1735-0000-0006-ABA2-Ede
dc.identifier.urihttp://dx.doi.org/10.53846/goediss-609
dc.description.abstractDa bislang in der Literatur nur wenig über posttranslationale Modifikationen in Form von Acetylierungsmustern von Polypeptiden in Prokaryonten bekannt ist, sollte in dieser Arbeit versucht werden, Erkenntnisse über die Prozesse der Deacetylierung zu gewinnen. Es konnte ein Enzym aus einem Stamm Bordetella/Alcaligenes FB188 isoliert werden, welches eine Deacetylierungsreaktion der Substanz cis-(±)-N-[4-(hydroxymethyl) cyclopent-2-enyl]acetamide (NAA) durchführt. Ein zweites Enzym, die PA3774 HDAH aus Pseudomonas aeroginosa konnte ebenfalls isoliert werden. Diese Enzyme weisen signifikante Ähnlichkeiten zu Enzymen der Histondeacetylase-Superfamilie (HDAC, APAH, acuC) auf und wurden deshalb als Histondeacetylase-ähnliche Amidohydrolasen (HDAH) klassifiziert. Um den Kreis der natürlichen Substrate einzuengen, wurde Substratspezifitätsstudien durchgeführt. Acetyl-Polyamine, die natürlichen Substrate der Acteylpolyamin-Amidohydrolasen (APAH), können als natürliche Substrate der FB188 HDAH, trotz einer engen Verwandtschaft zu den APAHs, aufgrund eines nur sehr geringen Umsatzes ausgeschlossen werden. Es scheint anhand der in dieser Arbeit gewonnenen Daten wahrscheinlicher, dass acetylierte Proteine das natürliche Substrat dieser Enzymklasse (HDAH) darstellen, da acetylierte Proteinstrukturen in Form von z.B. acetylierten Hühner-Histonen von der FB188 HDAH umgesetzt wurden. Um diese Thesen zu verifizieren wurden sowohl die FB188 HDAH als auch die PA3774 HDAH in einem fluorogenen HDAC Assay umfassender untersucht. Das Substrat Boc-Lys(Ac)-MCA wurde von beiden Enzymen in gleichem Umfang prozessiert, tripeptidische Substrate vom Aufbau AS1-AS2-Lys(Ac)-MCA wurden sequenzspezifisch ebenfalls gespalten. Im Rahmen von Studien mit weiteren Substraten erwies sich die FB188 HDAH im Gegensatz zur PA3774 HDAH als nicht enantioselektiv gegenüber Boc-L-Lysin(AC)-MCA bzw. Boc-D-Lys(Ac)-MCA. Des weiteren wurden Substratpräferenzen auch anhand von Kompetitions- und Inhibitionsexperimenten untersucht. In diesem Zusammenhang konnte ein neuer, potenter Inhibitor (CypX) identifiziert werden. Anhand von Mutagenese-Studien der FB188 HDAH und weiterführenden Untersuchungen zur Substratspezifität konnte ein in der Literatur postulierter Reaktionsmechanismus eines HDAC-ähnlichen Enzyms (HDLP aus A. aeolicus) nicht in allen Einzelheiten für die FB188 HDAH bestätigt werden. So führten Mutationen von als essentiell postulierten Aminosäuren führten nicht in allen Fällen zum Totalausfall des Enzyms. Auch Substrate mit besseren Abgangsgruppen zeigten nicht den erwarteten, schnelleren Umsatz des Substrates, so dass hier der vorhergesagte Katalysemechanismus, zumindest für die FB188 HDAH, überdacht werden muss. Auf der Suche nach dem natürlichen Substrat der FB188 HDAH konnten zunächst acetylierte Proteine in Zellextrakten aus verschiedenen Bakterien und Archäen nachgewiesen werde. Erste Untersuchungen deuten in diesem Zusammenhang auf ein Protein der Masse von ca. 65 kDa als natürliches Target der FB188 HDAH hin.de
dc.format.mimetypeapplication/pdfde
dc.language.isogerde
dc.rights.urihttp://webdoc.sub.gwdg.de/diss/copyr_diss.htmlde
dc.titleFunktionelle Charakterisierung bakterieller Histondeacetylase-ähnlicher Amidohydrolasen (HDAH)de
dc.typedoctoralThesisde
dc.title.translatedFunctional characterisation of bacterial histone deacetylase like amidohydrolases (HDAH)de
dc.contributor.refereeKolmar, Harald PD Dr.de
dc.date.examination2005-01-26de
dc.subject.dnb570 Biowissenschaften, Biologiede
dc.description.abstractengUntil today, there is only little information about posttranslational modifications, especially acetylation of polypeptides in procaryotes to find in the literature. This thesis tries to shed some light in the process of deacetylation. A deacetylating enzyme could be isolated from a Bordetella/Alcaligenes FB188 strain, which was able to process the substance cis-(±)-N-[4-(hydroxymethyl) cyclopent-2-enyl]acetamide (NAA). A second enzyme from Pseudomonas aeroginosa (PA3774 HDAH) with deacetylating properties could also be isolated. These enzymes show similarities to enzymes related to the histone deacetylase superfamily (HDAC, APAH, acuC) and were classified as histone deacetylase like amidohydrolases (HDAH). To find the natural substrate(s) of this class of enzymes, substrate specificity studies were carried out. Acetyl-polyamines, the natural substrates of acetylpolyamine amidohydrolases (APAH) can be excluded because of their very low turnover, despite the narrow relationship to this class of enzymes. It seems to be more supposable that the natural substrate(s) of this enzyme class are acetylated proteins. Acetylated chicken histones were processed by the FB188 HDAH. To verify this thesis, FB188 HDAH and PA3774 HDAH were characterized in a fluorogenic HDAC assay. The substrate Boc-Lys(Ac)-MCA was processed by both enzymes in similar degree, tripeptidic substrates from type aa1-aa2-Lys(Ac)-MCA were cleaved in a sequence specific mode. In further studies with the substrates Boc-L-Lysin(Ac)-MCA and Boc-D-Lys(Ac)-MCA, it was elucidated that the FB188 HDAH does not work enantiospecific, in contrast to the PA3774 HDAH. To get some more information about substrate preferences a variety of competition and inhibition experiments were carried out. In this context, a new potent inhibitor (CypX) could be identified. Further investigations questioning substrate specificity were made with mutation analyses of the enzyme. The mutation of essential amino acids, according to HDAC-like protein (HDLP from A. aeolicus), did not totally abolish catalytic activity in same cases. Also with substrates containing better leaving groups, the HDAHs did not show the expected higher turnover rates. So, the proposed mechanism of deacetylation must be reconsidered. Experiments to find the natural substrate of the FB188 HDAH resulted in acetylated proteins, which were found in both, bacteria and archaea. First findings in this context point to a 65 kDa protein, which could function as the natural target of the FB188 HDAH.de
dc.contributor.coRefereeFicner, Ralf Prof. Dr.de
dc.contributor.thirdRefereeIrniger, Stefan PD Dr.de
dc.subject.topicMathematics and Computer Sciencede
dc.subject.gerHDACde
dc.subject.gerHistondeacetylasede
dc.subject.gerInhibitorde
dc.subject.gerEnzymtestde
dc.subject.gerHochdurchsatzde
dc.subject.gerHTS;de
dc.subject.engHDACde
dc.subject.enghistone deacetylasede
dc.subject.enginhibitorde
dc.subject.engassayde
dc.subject.engScreeningde
dc.subject.engHTS;de
dc.subject.bk42.13de
dc.identifier.urnurn:nbn:de:gbv:7-webdoc-601-3de
dc.identifier.purlwebdoc-601de
dc.affiliation.instituteBiologische Fakultät inkl. Psychologiede
dc.subject.gokfullWF200de
dc.identifier.ppn501670017de


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