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In vivo imaging of long-term changes in the Drosophila neuromuscular junction

dc.contributor.advisorSigrist, Stephan PD Dr.de
dc.contributor.authorRasse, Tobias Manuelde
dc.date.accessioned2012-04-16T14:52:01Zde
dc.date.available2013-01-30T23:50:48Zde
dc.date.issued2005-02-11de
dc.identifier.urihttp://hdl.handle.net/11858/00-1735-0000-0006-AD26-7de
dc.identifier.urihttp://dx.doi.org/10.53846/goediss-309
dc.description.abstractBisher war es nicht möglich, die Entstehung neuer glutamaterger Synapsen in vivo zu beobachten. In dieser Arbeit wurden Protokolle etabliert, die die Beobachtung einzelner postsynaptischer Rezeptorfelder in einem definierten Zeitintervall erlauben. Hierzu wurden transgene Fliegenstämme etabliert, die es ermöglichten, Glutamatrezeptoren in lebendigen Fruchtfliegenlarven zu verfolgen und deren Mobilität zu quantifizieren. Das starke Wachstum der neuromuskulären Terminalen erlaubt es, mechanistische Fragen bezüglich der Entstehung neuer synaptischer Kontakte im Kontext von etablierten neuronalen Verbindungen zu stellen. Es konnte gezeigt werden, dass sich neue funktionelle Synapsen in der Regel entfernt von etablierten Synapsen bilden und dann schnell auswachsen. Hierbei scheint der Import der Glutamat-Rezeptor Untereinheit DGluRIIA das Wachstum des Rezeptorfeldes zu kontrollieren. Mit Hilfe von in vivo Bleich- und Photoaktivierungs- Experimenten konnte gezeigt werden, dass neu synthetisierte oder diffus verteilte, nicht synaptisch lokalisierte Rezeptoren selektiv in wachsende Synapsen integriert werden. Eben dieses Auswachsen neuer Rezeptorfelder und nicht die Teilung etablierter Rezeptorfelder scheint für die langfristige Stärkung der synaptischen Verbindung verantwortlich zu sein. Bereits etablierte Rezeptorfelder sind hingegen stabile Einheiten. Sie zeigen nur sehr geringen Import von neuen Rezeptoren, und keinen messbaren Export oder Verlust von Rezeptoren. Um die Koordination des Auswachsens pre- und postsynaptischer Strukturen aufzuklären, wurden zwei komplementäre Ansätze gewählt. Zum einen wurde ein Genom-weiter Screen initiiert, in dem Proteine an ihrem endogenen Locus mit GFP markiert wurden. Der Screen selbst wurde mit piggyBAC / P-Element Hybrid-Transposon durchgeführt. Hierbei wurden positive Larven mit Hilfe eines automatischen Embryonen-Sorters isoliert. Des Weiteren wurde das erste Protein, das in Drosophila an die Cytomatrix der aktiven Zone lokalisiert, identifiziert (Drosophila CAST). Dies stel lt den ersten Schritt zu dessen molekularer Charakterisierung dar und ermöglicht die simultane Visualisierung des Auswachsens pre- und postsynatischer Strukturen.de
dc.format.mimetypeapplication/pdfde
dc.language.isoengde
dc.rights.urihttp://webdoc.sub.gwdg.de/diss/copyr_diss.htmlde
dc.titleIn vivo imaging of long-term changes in the Drosophila neuromuscular junctionde
dc.typedoctoralThesisde
dc.title.translatedKonfokalmikroskopische Analyse von strukturellen und funktionellen Veränderungen an neuromuskulären Terminalen lebender Larven der Fruchtfliege Drosophila melanogasterde
dc.contributor.refereeSigrist, Stephan PD Dr.de
dc.date.examination2004-12-21de
dc.subject.dnb570 Biowissenschaften, Biologiede
dc.description.abstractengSo far synaptogenesis could hardly be studied in its native settings. In this thesis, an assay which allows the study of synapse formation and maturation in vivo was established in a genetically ideally addressable model system, the fruit fly Drosophila. Transgenic expression of GFP-labeled glutamate receptors was used to directly observe glutamate receptor dynamics at neuromuscular synapses of intact Drosophila larvae during the functional and structural strengthening of this synaptic circuit. It could be shown that small functional synapses form at sites distant from established synapses to then grow to a mature size. Thereby the growth of the postsynaptic density (PSD) is directly driven by the entry of glutamate receptors containing the subunit DGluRIIA. These receptors enter from diffuse extrasynaptic pools as shown by in vivo photo-labeling. Thus, de novo formation and subsequent growth of synapses but not the split of pre-existing synapses mediates strengthening of glutamatergic circuits in vivo. Once matured, PSDs of Drosophila neuromuscular synapses seem to be remarkably stable entities that show little receptor entry and no detectable exit of receptors. To complement in vivo imaging of synapse formation, a screen allowing the genome-wide GFP-labeling of proteins expressed from their endogenous genetic loci was initiated. To optimize the screening strategy, automated sorting of GFP-positive Drosophila embryos was combined with the usage of a novel transposable-element. How assembly of pre- and postsynaptic structures is coordinated in vivo is largely unknown. Here, the first Drosophila protein localized to the cytomatrix of active zones (Drosophila Cast) was identified. This served as an entry point for genetic analysis of the presynaptic active zone and allows the co-visualization of pre- and postsynaptic assembly in vivo.de
dc.contributor.coRefereeNeher, Erwin Prof. Dr.de
dc.contributor.thirdRefereeJäckle, Herbert Prof. Dr.de
dc.subject.topicMathematics and Computer Sciencede
dc.subject.gerDrosophilade
dc.subject.gerGlutamat-Rezeptorde
dc.subject.gerin vivode
dc.subject.gerCASTde
dc.subject.gerneuromuskuläre Terminalede
dc.subject.engDrosophilade
dc.subject.engglutamate receptorde
dc.subject.engin vivode
dc.subject.engCASTde
dc.subject.engexon-trapde
dc.subject.engneuromuscular junctionde
dc.subject.bk42.15de
dc.subject.bk42.75de
dc.identifier.urnurn:nbn:de:gbv:7-webdoc-20-0de
dc.identifier.purlwebdoc-20de
dc.affiliation.instituteBiologische Fakultät inkl. Psychologiede
dc.subject.gokfullWHC 700: Zellrezeptoren, Zellrezeptoren, Membranrezeptoren, Zelluläre Kommunikation {Cytologie}de
dc.identifier.ppn579211673de


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