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Functional properties and Ca2+-dependent feedback modulation of voltage-gated Ca2+ channels in glutamatergic nerve terminals of the mammalian auditory brainstem

dc.contributor.advisorTaschenberger, Holger Dr.de
dc.contributor.authorLin, Kun-Hande
dc.date.accessioned2012-04-16T14:55:29Zde
dc.date.available2013-01-30T23:50:38Zde
dc.date.issued2012-03-02de
dc.identifier.urihttp://hdl.handle.net/11858/00-1735-0000-0006-AE4C-9de
dc.identifier.urihttp://dx.doi.org/10.53846/goediss-534
dc.description.abstractDie funktionellen Eigenschaften vieler präsynaptischer Nervendigungen der Säugetiere sind noch weitgehend unbekannt, da die meisten Nervendigungen des Zentralnervensystems für elektrophysiologische Messungen nicht direkt zugänglich sind. In der vorliegenden Arbeit wurden funktionelle Eigenschaften sowie Ca2+-abhängige feedback -Modulation der präsynaptischen spannungsabhängigen Ca2+-Kanäle (VGCCs) untersucht. Zu diesem Zweck wurden patch-clamp-Messungen an zwei Typen von großen glutamatergen Nervendigungen im auditorischen Stammhirn der Maus den Heldschen Endbulbs und den Heldschen Calyces durchgeführt. Endbulb-Terminalien zeichnen sich durch einen hohen Eingangswiderstand und eine kleine Membrankapazität aus. Die in Endbulb-Terminalien exprimierten präsynaptischen VGCCs sind überwiegend vom P/Q-Typ. Durchschnittlich 6400 dieser Kanäle werden pro Terminal exprimiert. Die Aktivierung und Deaktivierung von präsynaptischen Ca2+-Strömen erfolgt sehr schnell. Simulation ergeben, dass der durch ein präsynaptisches Aktionspotential (AP) generierte Ca2+-Einstrom eine mittlere Halbweite von etwa 240 µs und eine Spitzenamplitude von etwa 0,45 nA hat. Diese Stromamplitude entspricht der Öffnung von etwa 2600 Einzelkanälen. Endbulb-Terminalien besitzen einen großen Vorrat an freisetzungsbereiten Vesikeln (RRP). Von den ca. 1064 Vesikel des RRP wird aber nur ein kleiner Teil während eines einzelnen APs verbraucht. Im Gegensatz zu Ca2+-Ströme an Calyx-Terminalien, zeigte der präsynaptische Ca2+-Einstrom in Endbulb-Terminalien keine Inaktivierung während AP-ähnlichen präsynaptischen Depolarisationen. Aufgrund ihrer Größe können Calyx-Terminalien leicht mittels Infrarot-Videomikroskopie visualisiert werden. Die in präsynaptische Calyx-Terminalien exprimierten Ca2+-Kanäle vom P/Q-Typ zeigen zwei Arten Ca2+-abhängiger feedback -Regulation Inaktivierung (CDI) und Bahnung (CDF). In dieser Arnbeit wurden die Mechanismen und die intrazelluläre Ca2+-Anforderungen für CDI und CDF untersuchten. Die Inaktivierung von ICa(V) in Calyx-Terminalien zeigte einen biphasischen Zeitverlauf. Die schnelle Komponente der Inaktivierung war Ca2+-abhängig. Das Ausmaß der durch lang anhaltende Depolarisation ausgelösten Inaktivierung war relativ unempfindlich gegenüber intrazellulären Ca2+ Chelatoren. Der durch Depletion von Ca2+ Ionen im synaptischen Spalt bzw. durch metabotrope Hemmung von ICa(V) verursacht Beitrag zur Inaktivierung des Stromes war vernachlässigbar. Die Erholung von ICa(V) nach Inaktivierung war langsam und zeigte einem biexponentiellen zeitlichen Verlauf mit durchschnittlichen Zeitkonstanten von ~320 ms und ~7,2 s. Im Gegensatz dazu erfolgte die Erholung nach Bahnung von ICa(V) sehr schnell mit einer mittleren Zeitkonstante von etwa 30 ms. Die zur Auslösung von CDI bzw. CDF erforderliche Erhöhung der intrazelluläre Ca2+ Konzentration wurde mittels Blitzlichtphotolyse von caged Ca2+ untersucht. Anhebungen der intrazellulären Ca2+ Konzentration im mikromolaren Bereich waren ausreichend, um CDI bzw. CDF zu induzieren. Halbmaximale Konzentrationen waren ~6 µM für CDI bzw. ~2 µM für CDF. Während wiederholter Stimulation mit AP-ähnlichen Depolarisationen erreichte das globale intrazelluläre Ca2+ Konzentrationen von einigen Mikromol. Dies deutet darauf hin, daß CDF und CDI während physiologischer Aktivität induziert werden können. Wegen der unterschiedlichen Erholungskinetiken von CDI und CDF wird die Bahnung des Ca2+-Einstroms vorwiegend bei hochfrequenter präsynaptischer Entladung auftreten, während niederfrequente Entladung zu einer kumulativen Inaktivierung der Kanäle führen kann.de
dc.format.mimetypeapplication/pdfde
dc.language.isoengde
dc.rights.urihttp://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/3.0/de
dc.titleFunctional properties and Ca2+-dependent feedback modulation of voltage-gated Ca2+ channels in glutamatergic nerve terminals of the mammalian auditory brainstemde
dc.typedoctoralThesisde
dc.title.translatedFunktionelle Eigenschaften und Ca2+-abhängige 'feedback'-Regulation spannungsaktivierter Ca2+-Kanäle in glutamatergen Nervterminalien des auditorischen Stammhirns der Säugetierede
dc.contributor.refereeSakaba, Takeshi Dr.de
dc.date.examination2011-04-08de
dc.subject.dnb570 Biowissenschaften, Biologiede
dc.description.abstractengThe functional properties of mammalian presynaptic nerve endings remain elusive since most terminals of the central nervous system are not accessible to direct electrophysiological recordings. In the present study, functional properties and Ca2+-dependent feedback modulation of presynaptic voltage-gated Ca2+ channels were studied by direct recordings from two types of large glutamatergic nerve terminals of the mammalian auditory brainstem endbulbs of Held and calyces of Held. Endbulb of Held terminals were identified by their high input resistance and small capacitance. Presynaptic VGCCs in endbulbs were predominantly of the P/Q type and expressed at a high density with an estimated average number of 6400 channels per terminal. Presynaptic Ca2+ currents activated and deactivated rapidly. Simulations of action potential (AP)-driven gating of VGCCs suggests that endbulb APs trigger brief Ca2+ influx with a mean half-width of 240 µs and a peak amplitude of 0.45 nA which results from the opening of approximately 2600 channels. Endbulb terminals are endowed with a large readily releasable vesicle pool (1064 vesicles) of which only a small fraction is consumed during a single AP-like stimulus. Unlike Ca2+ currents at the calyx of Held, ICa(V) of endbulb terminals showed no inactivation during trains of AP-like presynaptic depolarizations. Because of their larger size, calyx of Held terminals can be easily visualized. Presynaptic P/Q-type channels expressed in calyx terminals show two types of Ca2+-dependent feedback regulation inactivation (CDI) and facilitation (CDF). We studied the mechanisms and intracellular Ca2+ requirements for CDI and CDF. ICa(V) in calyx terminals inactivated with a biphasic time course. The fast component of inactivation was Ca2+-dependent. CDI during sustained depolarizations was relatively insensitive to Ca2+ chelators. The contribution to ICa(V) inactivation of Ca2+ depletion from the synaptic cleft or that of metabotropic feedback mechanisms was negligible. Recovery of ICa(V) from inactivation was slow and followed a biexponential time course with average time constants of ~320 ms and ~7.2 s. In contrast, ICa(V) facilitation decayed very fast with an average time constant of ~30 ms. Intracellular Ca2+ requirement for CDI and CDF were probed by Ca2+ uncaging via flash photolysis. [Ca2+]i elevations in the micromolar range were sufficient to induce CDI and CDF. Half maximum concentrations were ~6 µM and ~2 µM for CDI and CDF, respectively. During repetitive AP firing, the global [Ca2+]i can easily reach levels of a few micromoles in unperturbed calyx terminals suggesting that CDF and CDI can be induced during normal physiological presynaptic AP firing. Because of the divergent onset and recovery kinetics of CDI and CDF, facilitation of VGCCs is expected to occur during high-frequency AP bursts. In contrast, low-frequency firing will lead to cumulative inactivation of presynaptic VGCCs.de
dc.contributor.coRefereeMoser, Tobias Dr.de
dc.contributor.thirdRefereeNeher, Erwin Prof. Dr.de
dc.subject.topicBiology (incl. Psychology)de
dc.subject.gerElektrophysiologiede
dc.subject.gerPatch-Clamp Technikende
dc.subject.gerspannungsabhängigen Ca2+-Kanäle (VGCCs)de
dc.subject.gerCa2+-abhängiger Inaktivierung (CDI) und Bahnung (CDF)de
dc.subject.gerHeldschen Calycesde
dc.subject.gerHeldschen Endbulbsde
dc.subject.engElectrophysiologyde
dc.subject.engPatch-Clamp Techniquesde
dc.subject.engvoltage-gated Ca2+-Channelsde
dc.subject.engCa2+-dependent inactivation (CDI) and facilitation (CDF)de
dc.subject.engCalyx of Heldde
dc.subject.engEndbulb of Heldde
dc.subject.bk42.12de
dc.subject.bk42.17de
dc.identifier.urnurn:nbn:de:gbv:7-webdoc-3411-2de
dc.identifier.purlwebdoc-3411de
dc.affiliation.instituteBiologische Fakultät inkl. Psychologiede
dc.subject.gokfullWCK 000: Bioelektrizität und Biomagnetismus {Biophysik}de
dc.identifier.ppn715321145de


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