Zur Kurzanzeige

Solvatationsdynamik an biologischen Grenzschichten

dc.contributor.advisorVöhringer, Peter Prof. Dr.de
dc.contributor.authorSeidel, Marco Thomasde
dc.date.accessioned2003-12-10T15:09:57Zde
dc.date.accessioned2013-01-18T10:37:30Zde
dc.date.available2013-01-30T23:51:24Zde
dc.date.issued2003-12-10de
dc.identifier.urihttp://hdl.handle.net/11858/00-1735-0000-0006-B0BE-Dde
dc.identifier.urihttp://dx.doi.org/10.53846/goediss-2158
dc.description.abstractDie vorliegende Arbeit beschäftigt sich mit der Solvatationsdynamik an ausgewählten Grenzschichten zweier biologischer Modellsysteme. Als ein Modell für biologische Membranen dient eine synthetische Phospholipidmembran/Wasser-Grenzschicht. Zur Bestimmung der Solvatationsdynamik in solchen Umgebungen wird der zeitabhängige Fluoreszenz Stokes-Shift der Farbstoffsonde Laurdan herangezogen. Mit der experimentellen Technik des zeitkorrelierten Einzelphotonenzählens (TCSPC) werden die strukturellen Relaxationen auf einer Nanosekunden-Zeitskala charakterisiert. Durch einen Vergleich mit zeitaufgelösten Anisotropiemessungen wird gezeigt, daß die Solvatation auf dieser Zeitskala vorrangig durch diffusive Bewegungen des Chromophors in der eingeschränkten Lipidmembranumgebung bestimmt ist. Im Rahmen der Arbeit wurde zur Untersuchung der ultraschnellen Zeitkomponenten ein Fluoreszenzkonversionsexperiment aufgebaut, welches Untersuchungen bis in den sub-Pikosekundenbereich ermöglicht. Es zeigt sich, daß auf diesen Zeitskalen ultraschnelle Komponenten eine Rolle spielen, die vermutlich der Solvatation durch Wassermoleküle im Bereich der Lipidkopfgruppen zuzuordnen sind. Dabei ist die Dynamik im Vergleich zu reinem Wasser jedoch signifikant verlangsamt. Als zweites Modellsystem werden in dieser Arbeit inverse Mizellen betrachtet. Sie eignen sich hervorragend zum systematischen Studium eingeschränkter Wasserumgebungen, da sich der Grad der Einschränkung über die Größe des in diesen inversen Mizellen eingeschlossenen Wassernanotröpfchens variieren läßt. Die Solvatationsdynamik wird dabei mittels eines selektiv im Wassereinschluß der inversen Mizellen gelösten Indocarbocyanin-Farbstoffes bestimmt. Als experimentelle Technik kommt in diesen Systemen erstmals die Photon-Echo-Spektroskopie zum Einsatz, die die Bestimmung ultraschneller Zeitkomponenten auf einer Femtosekunden-Zeitskala ermöglicht. Um die in den Wassernanotröpfchen auftretenden Dynamiken einordnen zu können, werden komplementäre Untersuchungen desselben Chromophors in der reinen Wasserphase vorgestellt. Das Einbringen des Chromophors in das Wassernanotröpfchen inverser Mizellen zeigt keine ausgeprägte Veränderung der Solvatationsdynamik, d.h. die für reines Wasser charakteristischen strukturellen Relaxationsmoden bestimmen auch die Solvatation innerhalb des Wassereinschlusses inverser Mizellen. Die Erhöhung des Einschränkungsgrades durch eine Verringerung der Mizellengröße hat dabei einen überraschend geringen Effekt auf die zugrundeliegenden Dynamiken der Solvatation.de
dc.format.mimetypeapplication/pdfde
dc.language.isogerde
dc.rights.urihttp://webdoc.sub.gwdg.de/diss/copyrdiss.htmde
dc.titleSolvatationsdynamik an biologischen Grenzschichtende
dc.typedoctoralThesisde
dc.title.translatedSolvation dynamics at biological interfacesde
dc.contributor.refereeTroe, Jürgen Prof. Dr.de
dc.date.examination2003-11-05de
dc.subject.dnb540 Chemiede
dc.description.abstractengThe thesis focuses on the solvation dynamics at the interfaces of two representative biological model systems. A synthetic phospholipid membrane interface serves as a model for biological membranes. In such environments, the time-dependent fluorescence Stokes-shift of the dye laurdan is used to determine the dynamics of the solvation. Time-correlated single photon counting technique is used to characterize the structural relaxations on a nanosecond time-scale. By means of anisotropy measurements, it is shown that solvation on these time-scales is dominated by the diffusive motion of the chromophore in its restricted environment. To investigate the ultrafast components, a fluorescence up-conversion experiment is built to enable measurements in the sub-picosecond regime. On these time-scales, ultrafast components play a role which can presumably be assigned to solvation through water molecules in the head group region of the lipid-bilayers. However, the dynamics appear to be significantly slower than in the bulk water phase. The second system under investigation is reverse micelles. They are perfectly suited to systematically examine restricted water environments because it is possible to vary the grade of restriction through the size of the water-pool of the reverse micelles. The solvation dynamics is determined by using an indocarbocyanine dye dissolved in the water inclusion of the reverse micelles. For the first time, photon-echo spectroscopy is used in such a system to elucidate the underlying ultrafast dynamics on a femtosecond time-scale. Complementary investigations on the same chromophore in bulk water enable the classification of the dynamics in the water nano-droplets. The inclusion of the chromophore in the water pools of the reverse micelles does not show a significant alteration of the underlying solvation dynamics. In other words, the characteristic structural relaxation modes of bulk water determine the solvation in the water-pool of reverse micelles. An increase in the grade of restriction through reduction of the micelle size shows surprisingly little effect on the underlying solvation dynamics.de
dc.contributor.coRefereeAbel, Bernd Prof. Dr.de
dc.subject.topicMathematics and Computer Sciencede
dc.subject.gerFemtochemiede
dc.subject.gerFemtobiologiede
dc.subject.gerLaserspektroskopiede
dc.subject.gerZeitkorreliertes Einzelphotonenzählende
dc.subject.gerFluoreszenzkonversionsspektroskopiede
dc.subject.gerPhoton-Echo-Spektroskopiede
dc.subject.gerPeakshiftde
dc.subject.gerUltraschnelle Dynamikde
dc.subject.gerStrukturelle Relaxationde
dc.subject.gerSolvatationde
dc.subject.gerStokes-Shiftde
dc.subject.gerWasserde
dc.subject.gerWassernanotröpfchende
dc.subject.gerinverse Mizellende
dc.subject.gerMembranende
dc.subject.gerLipid-Vesikelde
dc.subject.gerAOTde
dc.subject.gerDMPCde
dc.subject.gerHIDCIde
dc.subject.gerLaurdande
dc.subject.gerTICTde
dc.subject.engfemtochemistryde
dc.subject.engfemtobiologyde
dc.subject.englaser spectroscopyde
dc.subject.engtime-correlated single photon countingde
dc.subject.engfluorescence up-conversionde
dc.subject.engphoton-echo spectroscopyde
dc.subject.engpeakshiftde
dc.subject.engultrafast dynamicsde
dc.subject.engstructural relaxationde
dc.subject.engsolvationde
dc.subject.engStokes-shiftde
dc.subject.engwaterde
dc.subject.engwater nano-dropletsde
dc.subject.engreverse micellesde
dc.subject.engmembranesde
dc.subject.englipid vesiclesde
dc.subject.engAOTde
dc.subject.engDMPCde
dc.subject.engHIDCIde
dc.subject.englaurdande
dc.subject.engTICTde
dc.subject.bk35.16de
dc.subject.bk35.21de
dc.subject.bk35.25de
dc.subject.bk35.78de
dc.identifier.urnurn:nbn:de:gbv:7-webdoc-546-8de
dc.identifier.purlwebdoc-546de
dc.affiliation.instituteFakultät für Chemiede
dc.subject.gokfullRRQ 000: Laser-Spektroskopie {Physik}de
dc.subject.gokfullSGC 000: Kinetik und Mechanismus chemischer Reaktionen {Chemische Kinetik}de
dc.subject.gokfullSIL 000: Laser-Chemie {Strahlungschemie}de
dc.subject.gokfullSMG 000: Lösungen {Chemie}de
dc.subject.gokfullWCE 000: Photobiologie {Biophysik}de
dc.subject.gokfullWHC 100: Zellmembranende
dc.subject.gokfullZelloberflächede
dc.subject.gokfullZellwandde
dc.subject.gokfullintrazelluläre Membranen {Cytologie}de
dc.identifier.ppn377478660de


Dateien

Thumbnail

Das Dokument erscheint in:

Zur Kurzanzeige