dc.contributor.advisor | Figura, Kurt von Prof. Dr. Dr. h.c. | de |
dc.contributor.author | Schieweck, Oliver | de |
dc.date.accessioned | 2012-05-16T12:10:43Z | de |
dc.date.available | 2013-01-30T23:50:51Z | de |
dc.date.issued | 2009-06-18 | de |
dc.identifier.uri | http://hdl.handle.net/11858/00-1735-0000-0006-B66F-D | de |
dc.identifier.uri | http://dx.doi.org/10.53846/goediss-1364 | |
dc.description.abstract | Lysosomen sind intrazelluläre vesikuläre
Kompartimente, die begrenzt von einer Membran und
definiert durch ein saures Milieu eine Vielzahl
verschiedener löslicher und Membran-gebundener Proteine
wie Hydrolasen und Transportsysteme enthalten. Sie
existieren in allen kernhaltigen eukaryotischen
Zelltypen und sind vor allem für die Degradation und
das Recycling aller zellulären Makromoleküle
verantwortlich. Die lysosomale Matrix enthält
wahrscheinlich mehr als fünfzig verschiedene Hydrolasen
wie Proteasen, Nukleasen, Glykosidasen, Sulfatasen und
Lipasen, während die lysosomale Membran viele
Transportsysteme zum Export der verschiedenen durch die
Abbauvorgänge entstehenden Abbauprodukte, zum Import
von Protonen zur Erhaltung des sauren pH und
Rezeptorproteine für die verschiedenen
Protein-Sortierungsvorgänge enthält. Viele Defekte
lysosomaler Membranproteine führen zu lysosomalen
Speicherkrankheiten, wie zum Beispiel die verschiedenen
Formen der ceroiden neuronalen Lipofuscinose (CNL). Da
davon ausgegangen werden kann, dass der Großteil der in
der lysosomalen Membran integrierten Proteine noch
nicht identifiziert wurde, war das Ziel dieser Arbeit,
neue lysosomale Membranproteine durch eine
Proteomics-Analyse zu identifizieren und anschließend
die lysosomale Lokalisation durch Immunfluoreszenz zu
überprüfen. Hierfür wurde die Leber von Mäusen
präpariert, die mit dem Detergens Tyloxapol (Triton
WR1339) behandelt waren. Die durch den Einbau des
Detergens in die Lysosomen gebildeten Tritosomen
niedriger Dichte ließen sich durch verschiedene
Zentrifugationsschritte zum großen Teil von den anderen
Zellorganellen abtrennen. Nach Öffnung der Tritosomen
und Reinigung der tritosomalen Membran durch Behandlung
mit Natriumcarbonat wurden die Membranproteine durch
die Verwendung verschiedener PAGE-Systeme gereinigt,
deglykosyliert um störende Zuckermodifikationen der
Proteine zu entfernen und nach In-Gel-Verdau mit
Trypsin mit MALDI-TOF-MS und -MS/MS analysiert. Dadurch
wurden insgesamt 193 verschiedene Proteine
identifiziert, von denen nach einer bioinformatischen
Untersuchung 13 als Kandidaten für eine Lokalisation in
der lysosomalen Membran eingestuft wurden. Von diesen
Kandidaten wurde das Protein mit dem Namen
hypothetisches Protein Loc72175 und ein weiteres
Protein (NCU-G1), das in einer Kooperation mit der
Arbeitsgruppe von Prof. Dr. Andrej Hasilik
identifiziert wurde, kloniert und rekombinant in den
eukaryotischen Zelllinien HeLa, HT1080 und MEF
exprimiert. Bei dem Loc72175-Protein handelt es sich um
ein Typ-3-Membranprotein, welches der MFS
Proteinfamilie zugeordnet werden kann, während es sich
bei dem NCU-G1 um ein Typ-1-Membranprotein handelt. Für
beide Proteine konnte eine lysosomale Lokalisation
durch die Kolokalisation mit dem lysosomalen
Markerprotein Lamp-2 bestätigt werden, während in
Versuchen mit anderen Markerproteinen eine Lokalisation
in anderen intrazellulären Komparimenten wie dem ER,
Golgi und den frühen Endosomen nicht gezeigt werden
konnte. Darüber hinaus wurden terminale lysososomale
Sortierungsmotive vom Tyrosin- und vom
Dileucin-basierten Typ in beiden Proteinen auf ihre
Bedeutung bei der intrazellulären Sortierung zu den
Lysosomen untersucht, indem kritische Aminosäuren
innerhalb dieser Sequenzen mutiert wurden. Dabei zeigte
sich, dass alle der hier untersuchten Motive für eine
Sortierung in die Lysosomen essentiell sind. | de |
dc.format.mimetype | application/pdf | de |
dc.language.iso | ger | de |
dc.rights.uri | http://creativecommons.org/licenses/by-nd/2.0/de/ | de |
dc.title | Proteomanalyse lysosomaler Membranen: Identifizierung und Charakterisierung neuer lysosomaler Membranproteine | de |
dc.type | doctoralThesis | de |
dc.title.translated | Proteome analysis of the lysosomal membrane: identification and characterization of novel lysosomal membrane proteins | de |
dc.contributor.referee | Ficner, Ralf Prof. Dr. | de |
dc.date.examination | 2008-07-02 | de |
dc.subject.dnb | 000 Allgemeines, Wissenschaft | de |
dc.description.abstracteng | Lysosomes are intracellullar acidic vesicles, which
contain a variety of soluble and membrane-bound
proteins like hydrolases and transport-systems. They
are found in all nucleated eukaryotic cells where they
are responsible for degradation and recycling of
cellular macromolecules. The lysosomal matrix contains
at least fifty hydrolases like proteases, nucleases,
glycosidases, sulfatases und lipases. In the lysosomal
membrane a lot of transport-systems care for the export
of various products of the lysosomal degradation or for
the import of protons maintaining the acidic pH,
whereas receptor proteins are part of protein-sorting
systems. A number of gene defects of lysosomal membrane
proteins are known to lead to lysosomal storage
diseases like the different versions of the ceroid
neuronal lipofuscinosis (CNL). Since the presence of
most of the lysosomal membrane-integrated proteins are
only predicted, based on biochemical studies, but not
identified so far, the aim of this study was to
identify new lysosomal membrane proteins by a proteomic
approach. For this purpose, lysosomes from mouse liver
treated with the detergent tyloxapol (triton WR 1339)
were isolated. These lysosomes, called tritosomes, are
of low density due to their loading with detergent and
could therefore be separated easily from other cell
organelles by centrifugation. After disruption of the
vesicles by sonication and washing with sodium
carbonate, the tritosomal membrane proteins were
isolated using different PAGE-Systems, deglycosylated
to remove oligosaccharide side chains and in
gel-digested with trypsin. The peptides were analyzed
by MALDI-TOF mass spectrometry generating peptide mass
fingerprints (PMF) and post source decay (PSD) fragment
spectra, and the mass data were used to identify the
corresponding proteins in mouse protein databases. In
total, 193 different proteins could be identified. A
bioinformatic examination revealed that thirteen of
them contain a signal sequence and at least one
transmembrane domain, making them candidates for a
localization in the lysosomal membrane. Two of these
candidates, the hypothetical protein Loc72175 and the
protein NCU-G1 (the latter has been identified in
cooperation with the group of Prof. Andrej Hasilik,
Institut für Physiologische Chemie, Marburg), were
cloned and expressed recombinantly in eukaryotic cell
lines (HeLa, HT1080, MEF). Loc 72175 is a type-3
membrane protein and a member of the major facilitator
superfamily, NCU-G1 a type-1 membrane protein. Both
proteins could be found to colocalize with the
lysosomal membrane protein Lamp-2, but not with marker
proteins for other cellular compartments like ER, Golgi
and early endosomes. For both proteins, lysosomal
sorting motives of the tyrosin- and dicleucin-type were
found and proved to be essential for targeting the
proteins to the lysosomes. | de |
dc.contributor.coReferee | Hoppert, Michael PD Dr. | de |
dc.contributor.thirdReferee | Hardeland, Rüdiger Prof. Dr. | de |
dc.subject.topic | Mathematics and Computer Science | de |
dc.subject.ger | Lysosomen | de |
dc.subject.ger | lysosomale Membranproteine | de |
dc.subject.ger | Proteomanalyse | de |
dc.subject.ger | NCU G1 | de |
dc.subject.ger | MFSd8 | de |
dc.subject.ger | lysosomale Lokalisation | de |
dc.subject.eng | lysosomes | de |
dc.subject.eng | lysosomal membrane proteins | de |
dc.subject.eng | proteom analysis | de |
dc.subject.eng | NCU G1 | de |
dc.subject.eng | MFSd8 | de |
dc.subject.eng | lysosomal localization | de |
dc.subject.bk | 42.15 Zellbiologie | de |
dc.identifier.urn | urn:nbn:de:gbv:7-webdoc-2141-7 | de |
dc.identifier.purl | webdoc-2141 | de |
dc.affiliation.institute | Biologische Fakultät inkl. Psychologie | de |
dc.subject.gokfull | WH 000: Cytologie {Biologie} | de |
dc.subject.gokfull | WHC 500: Organellen, Zellorganellen {Cytologie} | de |
dc.subject.gokfull | WHC 100: Zellmembranen, Zelloberfläche, Zellwand, intrazelluläre Membranen {Cytologie} | de |
dc.identifier.ppn | 611760932 | de |