• Deutsch
    • English
  • Deutsch 
    • Deutsch
    • English
  • Einloggen
Dokumentanzeige 
  •   Startseite
  • Zentren & Graduiertenschulen
  • GGNB - Göttinger Graduiertenzentrum für Neurowissenschaften, Biophysik und molekulare Biowissenschaften
  • Dokumentanzeige
  •   Startseite
  • Zentren & Graduiertenschulen
  • GGNB - Göttinger Graduiertenzentrum für Neurowissenschaften, Biophysik und molekulare Biowissenschaften
  • Dokumentanzeige
JavaScript is disabled for your browser. Some features of this site may not work without it.

Development of Fluorescence Activated Synaptosome Sorting (FASS) and analysis of VGLUT1 synapses from mouse brain

Entwicklung von „Fluorescence Activated Synaptosome Sorting“ (FASS) und die Analyse von VGLUT1-Synapsen des Mäusehirns

von Christoph Biesemann
Dissertation
Datum der mündl. Prüfung:2010-11-11
Erschienen:2012-10-05
Betreuer:Dr. Etienne Herzog
Gutachter:Prof. Dr. Nils Brose
Gutachter:Dr. Dieter Klopfenstein
Gutachter:Prof. Dr. Reinhard Jahn
crossref-logoZum Verlinken/Zitieren: http://dx.doi.org/10.53846/goediss-3185

 

 

Dateien

Name:biesemann.pdf
Size:10.5Mb
Format:PDF
ViewOpen

Lizenzbestimmungen:


Zusammenfassung

Englisch

Signal propagation between neurons in the brain is mediated by chemical synapses. Depending on the neurotransmitters and their receptors, synapses can transmit excitatory, inhibitory, or modulatory signals. A detailed knowledge about the biochemical composition of different subtypes of synapses is an essential requirement in order to study their function in physiology and pathology of the brain. Synaptosomes are functional nerve-terminals, including pre- and postsynapse, which have routinely been isolated from brain tissue by differential and density gradient centrifugation protocols since 1960. Synaptosome preparations have been utilized widely to analyze the function and protein composition of synapses for several decades. However, the interpretation of corresponding data is confounded by the fact that such synaptosome preparations contain many different types of synaptic particles as well as contaminations by non-synaptic particles from neurons and glia. In the present study, I established a new method, termed Fluorescence Activated Synaptosome Sorting (FASS), which extends traditional synaptosome preparations by selecting only fluorescent synapses using a cell sorter. A recently established fluorescent VGLUT1venus knock-in mouse line was used as a source of fluorescent VGLUT1 synaptosomes. I show here that FASS allows for the isolation of highly pure VGLUT1 synaptosomes containing pre- and post-synaptic elements. Further analysis of FASS purified VGLUT1venus synaptosomes provided insights into the synaptic distribution of neuroligins and into the distribution of glutamate receptors to synaptic and extrasynaptic sites. Using proteomic techniques I identified new proteins enriched at VGLUT1 synapses. For 3 of them (FXYD6, Ly6H and TPD52) I confirmed their expression and localization with independent methods. Taken together, this work shows that FASS is a powerful new tool to purify highly pure synaptic material which can serve to characterize synapses in biochemical, physiological and pathophysiological studies.
Keywords: Vesicular Glutamate Transporter; VGLUT; Fluorescence Activated Synaptosome Sorting; FASS; FACS; flow cytometry; synaptosome; proteomics; subcellular fractionation; synapse; FXYD6; Tpd52

Weitere Sprachen

Im Gehirn werden Signale zwischen Nervenzellen an chemischen Synapsen übermittelt. Ob eine Synapse dabei erregende, hemmende oder modulatorische Signale überträgt, hängt von den beteiligten Neurotransmittern und deren Neurotransmitter-Rezeptoren ab. Um die physiologische Funktion dieser unterschiedlichen synaptischen Subtypen und deren Beteiligung an pathologischen Prozessen im Gehirn zu untersuchen, ist die detaillierte Kenntnis ihrer biochemischen Zusammensetzung eine notwendige Vorraussetzung. Um die Proteinzusammensetzung und Funktion von Synapsen zu erforschen, fanden in den letzten Jahrzehnten Synaptosomenpräparationen breite Anwendung in der Wissenschaft. Als Synaptosomen bezeichnet man funktionelle synaptische Einheiten, die sowohl die Prä- als auch die Postsynapse enthalten und die seit 1960 routinemäßig mittels differentieller und Dichtegradientenzentrifugation aus Hirngewebe isoliert werden. Die Interpretation der von Synaptosomenpräparationen gewonnen Daten wird allerdings dadurch erschwert, dass die konventionelle Synaptosomenpräparation ein Gemisch von synaptischen Partikel aller synaptischen Subtypen enthält und durch einen beträchtlichen Anteil nicht-synaptischer Partikel, die von Glia und Neuronen stammen, verunreinigt ist. In der vorliegenden Arbeit habe ich zur weiteren Spezifizierung eine neue Methode entwickelt, welche die konventionelle Synaptosomenpräparation um die spezifische Selektion von fluoureszenten Synaptosomen mittels eines FACS-Gerätes erweitert. Hierbei diente eine vor kurzem in unserer Arbeitsgruppe entwickelte fluoreszente VGLUT1VENUS knock-in Mauslinie als Quelle fluoreszenter VGLUT1-Synapsen. Im Folgenden zeige ich, dass durch die von mir als „Flourescent Activated Synaptosome Sorting“ (FASS) bezeichnete Methode äußerst reine VGLUT1-Synaptosomen isoliert werden, die sowohl prä- als auch postsynaptische Bestandteile enthalten. Die weitere Untersuchung der FASS-aufgereinigten VGLUT1VENUS-Synaptosomen liefert Erkenntnisse über die synaptische Verteilung der Neuroligine und zeigt Unterschiede in der Verteilung von Glutamatrezeptoren zwischen synaptischen und extrasynaptischen Zonen. Eine Proteomanalyse zeigt die spezifische Anreicherung von 163 Proteinen in VGLUT1-Synapsen. Darunter sind viele bekannte synaptische Proteine, aber auch eine Vielzahl von Proteinen, für die noch keine Daten zur Lokalisation an VGLUT1-Synapsen vorliegen. Für drei dieser Proteine, nämlich FXYD6, Ly6H und TPD52, wird die Expression und Lokalisation an VGLUT1-Synapsen mit unabhängigen Methoden bestätigt. Zusammengenommen zeigt die vorliegende Arbeit, dass FASS ein neues und adäquates Verfahren für die Anreicherung von höchst reinem synaptischen Material ist, welches verwendet werden kann, um spezifische synaptische Subtypen in biochemischen, physiologischen oder pathophysiologischen Studien zu untersuchen.
Schlagwörter: Vesikulärer Glutamattransporter; VGLUT; Fluorescence Activated Synaptosome Sorting; FASS; FACS; Durchflusszytometrie; Synaptosom; Proteom; Subzelluläre Fraktionierung; Synapse; FXYD6; Tpd52
 

Statistik

Hier veröffentlichen

Blättern

Im gesamten BestandFakultäten & ProgrammeErscheinungsdatumAutorBetreuer & GutachterBetreuerGutachterTitelTypIn dieser FakultätErscheinungsdatumAutorBetreuer & GutachterBetreuerGutachterTitelTyp

Hilfe & Info

Publizieren auf eDissPDF erstellenVertragsbedingungenHäufige Fragen

Kontakt | Impressum | Cookie-Einwilligung | Datenschutzerklärung | Barrierefreiheit
eDiss - SUB Göttingen (Zentralbibliothek)
Platz der Göttinger Sieben 1
Mo - Fr 10:00 – 12:00 h


Tel.: +49 (0)551 39-27809 (allg. Fragen)
Tel.: +49 (0)551 39-28655 (Fragen zu open access/Parallelpublikationen)
ediss_AT_sub.uni-goettingen.de
[Bitte ersetzen Sie das "_AT_" durch ein "@", wenn Sie unsere E-Mail-Adressen verwenden.]
Niedersächsische Staats- und Universitätsbibliothek | Georg-August Universität
Bereichsbibliothek Medizin (Nur für Promovierende der Medizinischen Fakultät)
Robert-Koch-Str. 40
Mon – Fri 8:00 – 24:00 h
Sat - Sun 8:00 – 22:00 h
Holidays 10:00 – 20:00 h
Tel.: +49 551 39-8395 (allg. Fragen)
Tel.: +49 (0)551 39-28655 (Fragen zu open access/Parallelpublikationen)
bbmed_AT_sub.uni-goettingen.de
[Bitte ersetzen Sie das "_AT_" durch ein "@", wenn Sie unsere E-Mail-Adressen verwenden.]