dc.contributor.advisor | Böhnel, Helge Prof. Dr. Dr. | de |
dc.contributor.author | Vu, Thi Lam An | de |
dc.date.accessioned | 2013-01-31T07:56:40Z | de |
dc.date.available | 2013-01-31T07:56:40Z | de |
dc.date.issued | 2006-12-06 | de |
dc.identifier.uri | http://hdl.handle.net/11858/00-1735-0000-000D-F222-D | de |
dc.identifier.uri | http://dx.doi.org/10.53846/goediss-3600 | |
dc.description.abstract | Die Studie wurde durchgeführt, um ein
Verfahren zu entwickeln, mit dem Sporen der unterschiedlichen
C. botulinum Typen A, B, C, D, E und F
in optimierten Medien hergestellt werden können. Eine Methode zum
quantitativen Nachweis von C.-botulinum-Sporen in Honigproben wurde
erarbeitet. Dieses Verfahren war die Grundlage für eine
vergleichende Untersuchung über das Vorkommen von C. botulinum Sporen in Honig und Säuglingsnahrung.
Proben dieser Lebensmittel wurden bei Einzelhändlern und
Supermärkten in Ho Chi Minh Stadt, Vietnam und in Supermärkten in
Deutschland gekauft. Das Ziel dieser Untersuchung war,
festzustellen, ob Honig und Säuglingsnahrung eine mögliche
Bedrohung für Säuglinge und Kleinkinder in Vietnam und Deutschland
darstellen können.
Zunächst wurde die Sporenproduktion der unterschiedlichen
C.-botulinum-Typen A, B, C, D, E und F
mit verschiedenen Nährmedien optimiert. Während Typ A in TM, Typ B
in MAB, Typ D in SeM und Typ F in SM gut sporulierte, versporten
Typ C und Typ E besser auf FAAE. Die Versporungsrate lag 80-100% in
den flüssigen Medien und bei 70-90% auf Nährbodenplatten. Wurden
die Sporen nach der Ernte in SSS resuspendiert, war erhöhte sich
die Versporungsrate um 10-20%. Die Toxigenität der Sporen wurde
nicht beeinflusst. Eine MPN-PCR Methode wurde entwickelt, um
C.-botulinum-Sporen quantitativ im
Honig zu bestimmen. Autoklavierte Honigproben wurden mit einer
definierten Anzahl an Sporen der unterschiedlichen C.-botulinum-Typen entweder mit jedem Typ einzeln
oder mit einer Mischung aller Typen versetzt. Zwei Kulturmedien,
FAB und CMM, wurden als Anreicherungsmedien verwendet. Die Zahl der
wieder gefundenen Sporen entsprach der zugegebenen Menge,
unabhängig davon, ob nur ein Typ oder die Sporenmischung eingesetzt
worden war. Zwischen den beiden Anreicherungsmedien wurden keine
signifikanten Unterschiede beobachtet.
Im zweiten Abschnitt wurde Honig und Säuglingsnahrung in
Supermärkten in Ho Chi Minh Stadt, Vietnam, und in Deutschland
gekauft und auf das Vorkommen von C.-botulinum-Sporen mittels PCR untersucht. Die
amplifizierten Fragmente wurden durch Restriktionsenzymanalyse und
DNA-Sequenzierung verifiziert, die Kulturen im Mäusebioassay
geprüft.
Zwanzig von 179 (11.2%) Proben der Säuglingsnahrung und 8 von 99
(8.1%) der Honigproben, die in Vietnam gesammelt worden waren,
waren in der PCR positiv. Die höchste Anzahl von PCR-positiven
Proben fanden sich bei Garnelen-/Fisch- (23.3%) und
Obst-/Gemüse-Säuglingsnahrung (20%), während keine der
Reis-/Soja-Nahrungen PCR-positiv war. Von 50
Schweinefleisch-/Huhn-Säuglingsnahrungsproben waren 5 (10%)
PCR-positiv. Nur eine von 35 (2.9%) Milch-Säuglingsnahrungsproben
war positiv.C. botulinum Typ C wurde am häufigsten
in der Frucht/Gemüse- und der Garnelen/Fisch-Säuglingsnahrung
gefunden, während Typ D in den Honigproben am häufigsten ermittelt
wurde. Die Typen B und E wurden in verschiedenen Lebensmitteln
gefunden. Mehr als ein Typ wurde in 10 Säuglingsnahrungs- und in
zwei Honigproben nachgewiesen.
Acht (davon 6 Säuglingsnahrungs- und 2 Honigproben) von 46 in
Deutschland gekauften Proben enthielten C.-botulinum-Sporen. Alle
Säuglingsmilchpulverproben waren negativ, während 4 der 9
Getreidenahrungsproben, eine von 8 Kartoffelpurée- und eine von 7
Gemüsenahrungsproben positiv für Typ B waren. Zwei Honigproben
waren in der PCR positiv für Typen B und E. Obwohl alle
PCR-positiven Proben im Mäusebioassay negativ waren, zeigten die
Sequenzen ihrer PCR-Produkte eine hohe Homologie von 98-100% mit
Datenbanksequenzen (GeneBank). Eine Säuglingsnahrung, die
PCR-positiv für Typ C war, zeigte eine Sequenz, die nicht mit
C. botulinum identisch war. Weitere
Studien müssen durchgeführt werden, um ein mögliches Vorhandensein
von C.-botulinum-Sporen mit stillen
kodierenden Genen in Honig- und Säuglingsnahrungs-Proben zu
untersuchen. | de |
dc.format.mimetype | application/pdf | de |
dc.language.iso | eng | de |
dc.rights.uri | http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/3.0/ | de |
dc.title | Incidence of Clostridium botulinum Spores in Honey and Infant Food Samples Collected from Vietnam and Germany | de |
dc.type | doctoralThesis | de |
dc.title.translated | Vorkommen von Clostridium-botulinum-Sporen in Honig- und Säuglingsnahrungsproben aus Vietnam und Deutschland | de |
dc.contributor.referee | Meulen, Udo ter Prof. Dr. Dr. h.c. | de |
dc.date.examination | 2006-11-02 | de |
dc.subject.dnb | 630 Landwirtschaft, Veterinärmedizin | de |
dc.subject.gok | YNM 000 | de |
dc.description.abstracteng | This study was carried out to develop a
procedure for producing spore suspensions of different strains of
C. botulinum A, B, C, D, E, and F was
developed by applying different media. Moreover, a MPN-PCR method
was developed to enumerate C. botulinum
spores in honey samples, targeting the neurotoxin encoding
genes.
Another object of the study was the detection of viable
C. botulinum spores in honey samples
and infant foods purchased from retail stores and supermarkets in
Ho Chi Minh City, Vietnam, and from retail supermarkets in Germany.
The purpose of this survey was to determine if honey and infant
foods in these market areas would present a potential threat to
infants in Vietnam and Germany. The first phase of the study was
carried out producing spores of different strains of C. botulinum A, B, C, D, E, and F. This was carried
out using different media to enumerate spores of these strains in
honey samples. Different strains sporulated best in different
media. Type A strain 2298 sporulated well in trypticase medium
(TM), type B strain 2299 in modified Anellis Broth (MAB), type D
2301 in Segner Medium (SeM), type F 2303 in sporulation medium
(SM), type C 2300 and type E 2625 sporulated well on Fastidious
Anaerobe Agar with Egg Yolk (FAAE). The sporulation rate was
80-100% in the liquid media and 70-90% on agar plates. The use of
salt solution for sporulation (SSS) after harvesting the spores
from the sporulation media increased the sporulation rate by
10-20%, but did not affect the toxigenicity of the spores.
A MPN-PCR method was developed to enumerate C.
botulinum spores in honey. Sterilised honey samples were
spiked with a known number of spores of different strains of
C. botulinum. Each strain was
inoculated separately and there was also a mixture of all the
strains. Two media, FAB and CMM, were used as enrichment media. The
retrieved number of individual strains and mixed strain spores in
the spiked samples after incubation was similar and proportional to
the initial spore inoculation. This was regardless of the strain
type, or if the sample had mixed strains of spores. The results
were similar between the two enrichment media.
In the second phase, honey and infant food samples were collected
from supermarkets in Ho Chi Minh City, Vietnam and in Göttingen,
Germany. These were tested for the presence of C. botulinum spores using PCR. For confirmation of
the amplified fragments, DNA sequencing, restriction enzyme
reaction, and MBA were carried out.
Twenty of 179 (11.2%) infant food samples and 8 of 99 (8.1%) honey
samples collected from Vietnam were PCR positive. The highest
numbers of PCR-positive samples were shrimp/fish (23.3%) and
fruit/vegetable (20%) infant foods. None of rice/soya bean infant
foods was PCR positive. Out of 50 pork/chicken samples, five were
found PCR positive (10%). Only one of 35 (2.9%) milk infant foods
was positive. C. botulinum type C was
most frequently found in fruit/vegetable and shrimp/fish infant
foods, while type D was the most commonly detected in honey
samples. Types B and E were obtained from various types of infant
foods. More than one type was detected in ten infant foods and in
two honey samples.
Of 46 samples collected in Germany; eight, from which six were
infant foods and two were honey samples, harboured spores of
C. botulinum. All infant milk powder
samples were negative, while four of nine infant cereal formula,
one of eight potato purée, and one of seven vegetable formula
samples were positive for type B C.
botulinum. Two honey samples were found PCR positive for
types B and E. Although all PCR-positive samples were MBA negative,
comparison of the sequences of their amplified PCR products with
published sequences of C. botulinum
strains provided by the NCBI showed a high sequence homology of
98-100%. One type C PCR-positive sample showed a sequence that was
not identical with C. botulinum Gene
Bank entries. Further studies need to be conducted to investigate
the possibility of C. botulinum spores
with silent toxin encoding genes in strains of other types present
in honey and infant food samples. | de |
dc.subject.topic | Agricultural Sciences | de |
dc.subject.ger | Botulismus | de |
dc.subject.ger | C. botulinum | de |
dc.subject.ger | C.-botulinum-Sporen | de |
dc.subject.ger | Sporenproduktion | de |
dc.subject.ger | Mäusebioassay | de |
dc.subject.ger | PCR | de |
dc.subject.ger | Säuglingsnahrungsproben | de |
dc.subject.ger | C.-botulinum-Sporen quantitativ | de |
dc.subject.ger | Honigproben | de |
dc.subject.ger | Säuglingsnahrung | de |
dc.subject.ger | Säuglingsbotulismus | de |
dc.subject.ger | Inzidenz | de |
dc.subject.ger | Nachweis | de |
dc.subject.eng | C. botulinum | de |
dc.subject.eng | C. botulinum spores | de |
dc.subject.eng | spore production | de |
dc.subject.eng | neurotoxin | de |
dc.subject.eng | botulism | de |
dc.subject.eng | infant botulism | de |
dc.subject.eng | mouse bioassay | de |
dc.subject.eng | PCR | de |
dc.subject.eng | MPN-PCR | de |
dc.subject.eng | enumeration | de |
dc.subject.eng | detection | de |
dc.subject.eng | incidence | de |
dc.subject.eng | honey | de |
dc.subject.eng | infant foods | de |
dc.subject.bk | 46.50 Veterinärmedizinische Mikrobiologie | de |
dc.identifier.urn | urn:nbn:de:gbv:7-webdoc-1355-1 | de |
dc.identifier.purl | webdoc-1355 | de |
dc.identifier.ppn | 559822464 | de |