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Membrane mechanics governs cell mechanics in epithelial cell: how surface area regulation ensures tension homeostasis

dc.contributor.advisorJanshoff, Andreas Prof. Dr.de
dc.contributor.authorPietuch, Annade
dc.date.accessioned2013-04-04T08:55:48Zde
dc.date.available2013-12-07T23:50:04Z
dc.date.issued2013-04-04de
dc.identifier.urihttp://hdl.handle.net/11858/00-1735-0000-0015-8F66-9de
dc.identifier.urihttp://dx.doi.org/10.53846/goediss-3794
dc.description.abstractDie Plasmamembranspannung von eukaryotischen Zellen soll maßgeblich zur Regulation von zellulären Prozessen wie der Zellmigration, Mitose, Endo- und Exozytose, Membranreparatur, Osmoregulierung und Zellspreiten beitragen, welche zu einer Veränderung der Membranfläche und ihrer Deformation führt. In dieser Arbeit wurde die epitheliale Zelllinie MDCK II (Madin-Darby Canine Kidney) benutzt, um spannungsgesteuerte Oberflächenregulierung zu untersuchen. Indentationsexperimente kombiniert mit dem Herausziehen von Membrannanoröhren wurden mit Hilfe des Rasterkraftmikroskops (Atomic Force Microskope, AFM) durchgeführt, um lokale Variationen in der Membranspannung und überschüssiger Membranfläche als Funktion von äußeren Reizen abzuschätzen. Die verwendeten externen Stimuli beinhalten eine Veränderung der Funktionalität des Actomyosin-Cortexes durch die Wirkung von Blebbistatin und Cytochalasin D, sowie die Manipulation der Zytoskelett-Membran Adhäsionspunkte durch Einzel-Mikroinjektion. Die Injektion von Neomycin verhindert die Anbindung von ERM-Proteinen an das Lipid Phosphatidylinositol-(4,5)-bisphosphat (PIP2) und bewirkt somit die Abkopplung des Zytoskeletts von der Plasmamembran. Als Gegenexperiment diente die Injektion des Lipids PIP2 selbst, welches zur Erhöhung der Anzahl der Zytoskelett-Membran Adhäsionspunkte führte. Weiterhin wurden die als Membranreservoire dienenden Mikrovilli durch den Entzug von Cholesterol entfernt. Auswirkung auf das Vorhandensein von Membranreservoiren hat ebenfalls die Veränderung des osmotischen Drucks innerhalb der Zellen. Zusätzlich wurden die elastischen Eigenschaften von apikalen Zellmembran-Fragmenten von konfluenten MDCK II Zellen untersucht, welche Aufschluss über die intrinsischen Membraneigenschaften ohne den Einfluss des Zytosols und Zytoskeletts geben konnten. Abschließend wurde die Mechanik von adhärierenden und spreitenden Zellen untersucht. Zusammenfassend kann gesagt werden, dass die Plasmamembran, bestehend aus einer Phospholipiddoppelschicht, lateral schwer ausdehnbar ist aufgrund ihrer flüssig-kristallinen Natur. Durch das Vorhandensein von dynamischen Membranreservoiren wie Mikrovilli, die schnell auf Veränderungen der Membranspannung durch Membranhomöostase reagieren, werden zellulare Prozesse wie die Zellmotilität oder die Anpassung an osmotischen Stress ermöglicht. In der vorliegenden Arbeit gelang es gleichzeitig, die Membranspannung und die Verfügbarkeit von Membranfläche von adhärenten konfluenten als auch von adhärierenden und spreiten Zellen zu messen. Die durchgeführten Experimente ergaben ein detailliertes Bild wie sich die zelluläre Oberflächenregulierung in der Membranmechanik widerspiegelt.de
dc.language.isoengde
dc.publisherNiedersächsische Staats- und Universitätsbibliothek Göttingende
dc.rights.urihttp://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/3.0/
dc.subject.ddc540de
dc.titleMembrane mechanics governs cell mechanics in epithelial cell: how surface area regulation ensures tension homeostasisde
dc.typedoctoralThesisde
dc.contributor.refereeJanshoff, Andreas Prof. Dr.de
dc.date.examination2012-12-07de
dc.description.abstractengThe plasma membrane tension in eukaryotic cells is supposed to be a major regulator of many cellular processes that involve changes in membrane area and membrane deformation including cell migration, mitosis, endo -and exocytosis, membrane repair, osmoregulation, and cell spreading. The goal of this study is to investigate how polar epithelial cells adjust their surface area in response to tension changes induced by external stimuli that modulate cytoskeleton-membrane attachment, cytoskeleton integrity, cholesterol content, and morphology of the apical membrane. Here, confluent Madin-Darby canine kidney cells (MDCK II) were used to investigate tension-controlled cellular surface area regulation. Indentation experiments combined with pulling of membrane tethers carried out with an atomic force microscope (AFM) were used to simultaneously assess local changes in membrane tension and excess area as a function of external stimuli. Chemical stimuli comprise interference with the functionality of the actomyosin cortex using blebbistatin, cytochalasin D and the disassembly of cytoskeleton-membrane attachment sites via single cell injection of neomycin to abolish binding of ERM proteins to phosphatidylinositol(4,5)-bisphosphate (PIP2). To increase the number of binding sites for ezrin PIP2 is microinjected into single cells. Furthermore, microvilli are cleared off by cholesterol-extraction from the plasma membrane or the cells are challenged by different osmotic solutions to observe changes in membrane tension with respect to membrane tension buffering reservoirs. Additionally, the elastic properties of apical cell membrane sheets derived from confluent MDCK II cell monolayers are determined in the absence of the cell interior and devoid of the cytoskeleton. Finally, the mechanical changes encompassing cell adhesion to the substrate and spreading are investigated. In conclusion, the plasma membrane consisting of a phospholipid bilayer is laterally inextensible due to its liquid-crystalline nature thereby producing restoring forces in response to deformation. This renders certain cellular tasks such as motility and adaption to osmotic stress challenging with respect to lysis. A solution for this problem is the presence of highly dynamic membrane reservoirs such as microvilli with its rapid accessibility controlled by homeostasis of lateral tension. Here, the plasma membrane’s in-plane tension and the available surface area were measured simultaneously in a precise and local fashion using either confluent cell monolayers or single cells. The experiments allow us to draw a comprehensive picture of how surface area regulation is reflected in membrane mechanics.de
dc.contributor.coRefereeGroßhans, Jörg Prof. Dr.de
dc.subject.engmembrane tensionde
dc.subject.engcell surface areade
dc.subject.engmicrovillide
dc.subject.engcell mechanicsde
dc.subject.engmembrane tetherde
dc.subject.engindentationde
dc.identifier.urnurn:nbn:de:gbv:7-11858/00-1735-0000-0015-8F66-9-5de
dc.affiliation.instituteFakultät für Chemiede
dc.subject.gokfullChemie  (PPN62138352X)de
dc.description.embargoed2013-04-30de
dc.identifier.ppn775642762


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