Determination of the Structure of the Spliceosomal U6 snRNP from Yeast, Saccharomyces cerevisiae
Untersuchung der Struktur des spliceosomalen U6 snRNPs in der Hefe, Saccharomyces cerevisiae
by Ramazan Karaduman
Date of Examination:2006-11-02
Date of issue:2007-08-09
Advisor:Prof. Dr. Reinhard Lührmann
Referee:Prof. Dr. Ralf Ficner
Referee:Prof. Dr. Hans-Joachim Fritz
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Format:PDF
Description:Dissertation
Abstract
English
The U6 small nuclear RNA (snRNA) undergoes major conformational changes during the assembly of the spliceosome and catalysis of splicing. It associates with the specific protein Prp24p, and a set of seven LSm2 8 proteins, to form the U6 small nuclear ribonucleoprotein (snRNP). These proteins have been proposed to act as RNA chaperones that stimulate pairing of U6 with U4 snRNA to form the intermolecular stem I and stem II of the U4/U6 duplex, whose formation is essential for spliceosomal function. However, the mechanism whereby Prp24p and the LSm complex facilitates U4/U6 base-pairing, as well as the exact binding site(s) of Prp24p in the native U6 snRNP, are not well understood. In order to understand the binding site(s) of Prp24 and LSm 2-8 proteins on the U6 snRNA, as well as to shed light on the mechanism whereby Prp24p and the LSm complex facilitate U4/U6 base pairing, purified native U6 snRNPs were thoroughly characterized by chemical structure probing, UV-cross linking and hydroxyl radical footprinting. These three methods demonstrate that the naked U6 snRNA structure is very compact, whereas in the presence of Prp24p and the LSm proteins, the RNA structure in the U6 particle is much more open. This is particularly apparent for the 3´-stem loop and a large internal asymmetrical loop of the U6 snRNA, in which several nucleotides are accessible to chemical modification in the U6 snRNP but are inaccessible to such modification in the naked U6 snRNA. Prp24p binds strongly to the left-hand part of the asymmetrical loop (nucleotides 40 60) and only weakly to the 3´-stem loop in the U6 snRNP. On the contrary, initially a binding of the LSm proteins in the U6 snRNP could not be detected. Interestingly, the 3´-stem loop of the U6 snRNA is strongly contacted by Prp24p when LSm proteins are missing, while, in the presence of both Prp24p and LSm2p-8p the 3´-stem loop assumes a more open conformation. Therefore, we suggest that Prp24p presents the Watson-Crick base pairing positions of the asymmetrical loop. In addition, in cooperation with LSm proteins, Prp24p might be involved in opening up the U6 RNA regions, whereby promoting the formation of stems I and II of the U4/U6 duplex. Interestingly, we find that the open structure of the yeast U6 snRNA in native snRNPs can also be adopted by human U6 and U6atac snRNAs. A chaperone-like activity of LSm proteins was suggested during the U4/U6 annealing. However, how the LSm proteins interact with Prp24p in U6 snRNPs and how the LSm2p-8p complex is involved in U4 and U6 snRNA base pairing are still unclear. To learn more about how Prp24p and LSm proteins are spatially organised, we used electron microscopy. Depending on whether U6 snRNP particles were chemically fixed prior to electron microscopy sample preparation or not, yeast U6 snRNPs show two different structural configurations: (1) open or (2) a compact close form. Electron microscopy analysis of U6 snRNPs with an open form shows a slightly elongated shape with two distinct substructures. One substructure has a round shape with an accumulation of stain in its centre, which is typical for the LSm heptamer. The second substructure consists of a bundle of smaller domains and contains the other large protein mass of the U6 snRNP, the Prp24p protein. The close form of U6 snRNPs exhibits a more compact structure. Moreover, the two substructures in the close form are hardly discernable probably because the Prp24p protein overlaps the typical ring structure of the LSm proteins. Indeed, such a conformation would allow more interactions between Prp24p and LSm proteins as shown previously by yeast two hybrid analysis. Although the open form derived from unfixed U6 snRNPs shows structural heterogeneity, single particle image analysis revealed much more defined image classes with the fixed particle. This closed form might reflect indeed a biologically relevant state of U6 snRNP in solution. The positions of various LSm proteins were investigated by tagging with genetically introduced yECitrine globular protein. These results showed that the LSm4, -5, -6, -7, and -8 proteins are located at well-defined positions in the LSm ring relative to the Prp24p domain, while LSm2p and -3p are found near the Prp24p domain. Indeed, our cross linking data showed that the Prp24p and the LSm2 protein in the LSm complex contact relatively close nucleotides at the base of the U6 snRNA stem region. This further confirms that LSm2p, eventually with LSm3p, are in close proximity to the Prp24p domain. Our results also confirm the previously proposed order of LSm proteins as 4-8-2-3-5-6-7 in the LSm ring. Our data obtained by electron microscopy analysis of unfixed or fixed U6 snRNP particles suggest that different configurations of open and close forms might have important functional implications. During the transition from close to open form or vice versa, U6 snRNA might undergo further structural rearrangements, which would promote the annealing of the stems I and II of U4/U6 duplex.
Keywords: yeast U6 snRNP; yeast U6 snRNA; Prp24p; LSm2 8p proteins; RNA structure probing; electron microscopy; YFP labelling
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Die U6 small nuclear RNA (snRNA) durchläuft im
Verlauf des prä-mRNA Spleißens und des
Spliceosome-assembly wichtige katalytische
Konformationsänderungen. Sie assoziiert mit dem
spezifischen Protein Prp24, und einem Proteinkomplex
bestehend aus sieben LSm Proteinen, welche dann das U6
small nuclear ribonucleoprotein (U6 snRNP) formen.
Diese Proteine wurden als RNA chaperones beschrieben,
welche die Bindung der U6 snRNA mit U4 snRNA
stimulieren. Sowohl der genaue Mechanismus, wie das
Prp24 Protein und der LSm-Komplex die U4/U6 Verbindung
fördern, als auch die Bindestellen des Prp24 Proteins
in dem U6 snRNP sind jedoch nicht bekannt. Um die
Bindestellen des Prp24 Proteins und der LSm Proteine an
der U6 snRNA, sowie den Mechanismus der U4/U6
Assoziation zu verstehen, wurden die aufgereinigten
nativen U6 snRNP Partikel mit chemical structure
probing, UV-crosslinking und hydroxyl radical
footprinting charakterisiert. Die drei Methoden weisen
nach, dass die nackte U6 snRNA eine sehr kompakte
Struktur hat, in Anwesenheit des Prp24 Proteins und der
LSm Proteine die RNA des U6 Partikels aber eine weitaus
offenere Struktur aufweist. Dies gilt offenbar
besonders für den 3 -Stem Loop und für den großen
assymetrischen internen Loop der U6 snRNA. In dieser
Anordnung werden mehrere Nukleotide im U6 snRNP für
Modifikation leicht zugänglich, welche in der nackten
U6 RNA nicht modifiziert werden. Das Prp24 Protein hat
eine starke Bindungsstelle an dem großen Loop
(Nukleotide 40-60) und eine schwächere an dem 3 -Stem
Loop im U6 snRNP. Eine Bindungsstelle für die
LSm-Proteine im U6 snRNP konnte jedoch nicht bestimmt
werden. Interessant ist, dass in Abwesenheit der
LSm-Proteine der 3 -Stem Loop der U6 snRNA mit dem
Prp24 Protein stärker gebunden ist. In der Anwesenheit
des Prp24 Proteins und der LSm Proteine, nimmt der
3 -Stem Loop eine geöffnete Konformation an. Wir gehen
von der Annahme aus, dass die Prp24 Protein-Bindung an
der U6 snRNA die Watson-Crick Basenpaarungs-Stellen
des assymetrischen Loops mit der U4 snRNA exponieren
könnte. Zusätzlich kann man anmerken, dass die Bildung
von Stem I und II des U4/U6 Duplexes durch die
Kooperation der LSm Proteine mit dem Prp24 Protein
vermittelt werden kann. Wir nehmen an, dass die
geöffnete Struktur der Hefe U6 snRNA in nativen U6
Partikeln auch auf die beiden humanen snRNAs U6 und
U6atac übertragen werden kann. Es konnte eine
chaperonartige Aktivität der LSm Proteine bei der
Bindung der U4 snRNA an U6 snRNA gezeigt werden. Wie
die LSm Proteine mit dem Prp24 Protein im U6 snRNP
interagieren, als auch wie der LSm-Komplex die U4/U6
Verbindung fördert ist jedoch nicht bekannt. Um zu
verstehen, wie das Prp24 Protein und der LSm-Komplex
räumlich organisiert sind, wurden hochreine U6 partikel
mittels Elektronenmikroskopie untersucht. Je nachdem ob
die U6 Partikel chemisch fixiert sind oder nicht, zeigt
das U6 snRNP im Elektronenmikroskop zwei
unterschiedliche Konfigurationen: (1) eine geöffnete
oder (2) eine kompakte Form. Die geöffnete Form hat
eine langgestreckte Gestalt mit zwei deutlichen
Substrukturen. Eine Domäne besitzt eine eher runde
Form, während die andere kantig und eckig aussieht. Mit
einem zentralen Kontrastmittel-Fleck zeigt die runde
Substruktur das typische Erscheinungsbild des
ringförmigen LSm-Komplexes. Die zweite Domäne enthält
den großen Proteinbestandteil des U6 snRNPs, das Prp24
Protein. Die fixierten U6 snRNPs erscheinen wesentlich
kompakter. Die zwei Substrukturen, des LSm-Rings und
die Prp24 Protein-Domäne, sind nun kaum noch als
getrennte Domänen zu erkennen. Die kompakte Struktur
kann die Wechselwirkung zwischen das Prp24 Protein und
den LSm-Proteinen bewerkstelligen, wie auch die im
Two-Hybrid-Assay beobachteten Interaktionen zwischen
Prp24 Protein und den LSm-Proteinen vermuten lassen.
Obwohl die geöffnete Form des U6 snRNPs keine zufrieden
stellende Detailwiedergabe ermöglichte, enthalten die
fixierten U6 snRNPs gut definierte Klassensummen. Die
kompakte Form des U6 snRNPs könnte die authentische
Struktur sein, da die fixierten U6 Partikel eine
relativ einheitliche 3D Struktur aufweisen. Um
Informationen über Position der LSm-Proteine im Ring
und im besonderen über Nähe zur Prp24 Protein-Domäne zu
erfahren, wurden LSm-Proteine mit dem yECitrine-Protein
markiert. Die Markierungsexperimente zeigten, dass die
LSm4, -5, -6, -7, -8 Proteine deutlich entfernt von der
Stelle des LSm-Rings, von der die Prp24 Protein-Domäne
entspringt, liegen. Diese Experimente zeigten auch,
dass die LSm2 und LSm3 Proteine wahrscheinlich nahe der
Prp24 Protein-Bindungsstelle lokalisiert sind. Unsere
UV-Crosslinking Experimente zeigten, dass das Prp24
Protein und das LSm2 Protein zu nahe
beieinanderliegenden Nukleotiden UV quervernetzt werden
können. Dies deutet drauf hin, dass das LSm2 protein,
eventuell auch das LSm3 Protein, im LSm-Ring näher zur
Prp24 Protein-Bindungsstelle positionert ist als die
anderen LSm-Proteine. Die Markierungsexperimente
bestätigten auch, dass die hauptsächlich aus
Interaktionsdaten abgeleitete LSm-Protein-Abfolge
2-3-6-5-7-4-8 auch tatsächlich im LSm-Ring des U6
snRNPs so vorliegt. Unsere elektronenmikroskopische
Analyse des unfixierten und fixierten U6 snRNPs lassen
uns vermuten, dass die zwei Konfigurationen der
geöffneten oder der kompakten Form des U6 snRNPs
möglicherweise funktionell relevant sind. Der Wechsel
von kompakter Form zu offener Form könnte durch die
initiale Bindung der U4 snRNA veranlaßt sein, und so
die späten Schritte der U4 snRNA-Bindung
ermöglichen.
Schlagwörter: hefe U6 snRNP; hefe U6 snRNA; Prp24p; LSm Proteine; RNA Struktur Probing; Elektronenmikroskopie; YFP-Markierung